Gattung der Familie Iridoviridae Aus Wikipedia, der freien Enzyklopädie
Ranavirus ist eine Gattung von Riesenviren (Nucleocytoviricota, NCLDVs) aus der Familie der Iridoviridae, Unterfamilie Alphairidovirinae.[2]Ranavirus ist die einzige Gattung in dieser Familie, deren Viren sowohl für Amphibien als auch Reptilien ansteckend sind.
Wie auch die beiden anderen Gattungen Lymphocystivirus und Megalocytivirus der Unterfamilie Alphairidovirinae können Viren der Gattung Ranavirus auch Echte Knochenfische (Teleostei) infizieren.[3]
TEM-Aufnahme einer von Ranaviren infizierten Zelle, die sich im Zytoplasma ansammeln und neben dem Zellkern Klumpen bilden
Die Ranaviren sind wie die Megalocytiviren eine Gruppe eng verwandter dsDNA-Viren, deren Bedeutung immer mehr zunimmt.
Sie verursachen systemische Erkrankungen bei einer Vielzahl von wilden und kultivierten Süß- und Salzwasserfischen.
Wie bei Megalocytiviren sind Ranavirus-Ausbrüche in Aquakulturen von erheblicher wirtschaftlicher Bedeutung, da Tierseuchen zu beträchtlichem Verlust oder gar Massensterben von Zuchtfischen führen können.
Im Gegensatz zu den Megalocytiviren wurden Ranavirus-Infektionen bei Amphibien als ein Faktor für den weltweiten Rückgang der Amphibienpopulationen in Betracht gezogen.[4][5]
Der Einfluss von Ranaviren auf Amphibienpopulationen wurde mit dem des ChytridenpilzBatrachochytrium dendrobatidis, dem Erreger der Chytridiomykose, verglichen.[6][7][8]
Im Vereinigten Königreich wird angenommen, dass die Schwere der Krankheitsausbrüche aufgrund des Klimawandels (soll heißen: der globalen Erwärmung) zugenommen hat.[9]
Die Vorsilbe von lateinischRana‚Frosch‘ abgeleitet[10] und erinnert an die erste Isolierung eines Ranavirus aus dem Nördlichen Leopardfrosch (Rana pipiens alias Lithobates pipiens) in den 1960er Jahren.[11][12][13]
Von den folgenden Reptilienarten ist bekannt, dass sie Ranavirus infiziert werden können:
Ranaviren sind große ikosaedrische DNA-Viren mit einem Durchmesser von etwa 150nm und einem unsegmentierten linearen dsDNA-Genom von etwa 105kbp,[22]
Es gibt etwa 100 ProteinekodierendeGene.[23]
Genom
Das Genom von Frog virus 3 hat eine Länge von 105.903bp und kodiert voraussichtlich 99 Proteine.[24]
Schemazeichnung zum Replikationszyklus der Gattung Ranavirus
Die Replikation der Ranaviren ist bei Frog virus 3 (FV3) gut untersucht.
Die Replikation von FV3 erfolgt bei 12 bis 32°C.[23]
Ranaviren gelangen durch Rezeptor-vermittelte Endozytose in die Wirtszelle.[25]
Die Viruspartikel (Virionen) sind unbeschichtet und wandern nach dem Eindringen durch die Endocytose in den Zellkern, wo die virale DNA-Replikation über eine viruskodierte DNA-Polymerase beginnt.[26]
Die Virus-DNA verlässt dann den Zellkern und es beginnt die zweite Stufe der DNA-Replikation im Zytoplasma, wobei letztendlich DNA-Concatemere gebildet werden.[26]
Die virale DNA wird dann in infektiöse Virionen verpackt.[27]
Replikation am Beispiel von Singapore grouper iridovirus (SGIV)
Kapsid-Morphogenese von Singapore Grouper Iridovirus (SGIV) in einer viral assembly site (VAS)
Kryo-EM-Aufnahme von reifen SGIV-Virionen mit asymmetrischem haarnadelförmigen Komplex auf der einen Seite (schwarzer Pfeil). Für die Sichtbarkeit ist eine in geeignete Orientierung nötig.
Virale Akkumulation von SGIV-Partikeln zu einer parakristallinen Anordnung.
SGIV: Proteine verformen die Membran und bilden eine spezifische spiralförmige Struktur. Die Vakuolenmembran wird so zu einem Membrantubulus, der das Virion im Inneren der Vakuole enthält (Pfeile links).
Das Genom von Ranavirus weist wie bei anderen Iridoviridae terminal redundante DNA auf.[26]
Es wird angenommen, dass die Übertragung von Ranaviren auf mehreren Wegen erfolgt, unter anderem über kontaminiertem Boden, direkten Kontakt, Exposition durch Wasser und Verschlucken von infiziertem Gewebe während der Jagd, Nekrophagie oder Kannibalismus. Ranaviren sind in Gewässern relativ stabil und können außerhalb eines Wirtsorganismus mehrere Wochen oder länger überdauern.[12]
Die Ranaviren scheinen sich aus einem Fischvirus entwickelt zu haben, das anschließend Amphibien und Reptilien infizierte.[31]
Ein Zelle des Chinesischen Riesensalamanders (Andrias davidianus), infiziert mit Andrias davidianus ranavirus (ADRV)EM-Aufnahmen von Virionen des Singapore grouper iridovirus (SGIV) in verschiedenen Stadien.
Die innere Systematik der Gattung Iridovirus ist mit Stand 30. April 2024 nach ICTV, ergänzt um einige Vorschläge in doppelten Anführungszeichen (nach NCBI, wo nicht anders angegeben):[32][33]
Stephen J.Price,Trenton W.J.Garner,Richard A.Nichols,FrançoisBalloux,CésarAyres,AmparoMora-Cabello de Alba,JaimeBosch:Collapse of Amphibian Communities Due to an Introduced Ranavirus. In: Current Biology. 24. Jahrgang, Nr.21, November 2014, S.2586–2591, doi:10.1016/j.cub.2014.09.028 (elsevier.com).
James K.Jancovich,JingheMao,V. GregoryChinchar,ChristopherWyatt,Steven T.Case,SudhirKumar,GrazielaValente,SankarSubramanian,Elizabeth W.Davidson,James P.Collins,Bertram L.Jacobs:Genomic sequence of a ranavirus (family Iridoviridae) associated with salamander mortalities in North America. In: Virology. 316. Jahrgang, Nr.1, 2003, S.90–103, doi:10.1016/j.virol.2003.08.001, PMID 14599794.
Jesse L.Brunner,Danna M.Schock,Elizabeth W.Davidson,James P.Collins:Intraspecific Reservoirs: Complex Life History and the Persistence of a Lethal Ranavirus. In: Ecology. 85. Jahrgang, Nr.2, 2004, S.560, doi:10.1890/02-0374.
Pearman, Peter B.,Trenton W.J.Garner:Susceptibility of Italian agile frog populations to an emerging strain of Ranavirus parallels population genetic diversity. In: Ecology Letters. 8. Jahrgang, Nr.4, 2005, S.401, doi:10.1111/j.1461-0248.2005.00735.x.
Stephen J.Price,William T.M.Leung,Christopher J.Owen,RobertPuschendorf,ChrisSergeant,Andrew A.Cunningham,FrancoisBalloux,Trenton W. J.Garner,Richard A.Nichols:Effects of historic and projected climate change on the range and impacts of an emerging wildlife disease. In: Global Change Biology. 9.Mai 2019, ISSN1354-1013, doi:10.1111/gcb.14651 (wiley.com).
A.Granoff,P.E.Came,K.A.Rafferty:The isolation and properties of viruses from Rana pipiens: their possible relationship to the renal adenocarcinoma of the leopard frog. In: Annals of the New York Academy of Sciences. 126. Jahrgang, Nr.1, 1965, S.237–255, doi:10.1111/j.1749-6632.1965.tb14278.x, PMID 5220161, bibcode:1965NYASA.126..237G.
First identification of a ranavirus from green pythons (Chondropython viridis),Williamson,Coupar,Middleton,Hengstberger,Gould,Selleck,Wise,Kattenbelt,Cunningham,Lee:First identification of a ranavirus from green pythons (Chondropython viridis). In: Journal of Wildlife Diseases. 38. Jahrgang, Nr.2, 2002, S.239–252, doi:10.7589/0090-3558-38.2.239, PMID 12038121.
Benetka V.:First report of an iridovirus (genus Ranavirus) infection in a leopard tortoise (Geochelone pardalis pardalis). In: Vet Med Austria. 94. Jahrgang, 2007, S.243–248 (schildkroeten-sfb.ch (Mementodes Originalsvom 12.August 2017im Internet Archive) [abgerufen am 22.September 2014]).Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.schildkroeten-sfb.ch
A. P.De Matos,M. F.Caeiro,TPapp,B. A.Matos,A. C.Correia,R. E.Marschang:New viruses from Lacerta monticola (Serra da Estrela, Portugal): Further evidence for a new group of nucleo-cytoplasmic large deoxyriboviruses (NCLDVs). In: Microscopy and Microanalysis. 17. Jahrgang, Nr.1, 2011, S.101–108, doi:10.1017/S143192761009433X, PMID 21138619, bibcode:2011MiMic..17..101A.
A. J.Johnson,A. P.Pessier,E. R.Jacobson:Experimental transmission and induction of ranaviral disease in Western Ornate box turtles (Terrapene ornata ornata) and red-eared sliders (Trachemys scripta elegans). In: Veterinary Pathology. 44. Jahrgang, Nr.3, 2007, S.285–297, doi:10.1354/vp.44-3-285, PMID 17491069.
Blahak S., Uhlenbrok C. "Ranavirus infections in European terrestrial tortoises in Germany". Proceedings of the 1st International Conference on Reptile and Amphibian Medicine; Munich, Germany. 4–7 March 2010; S. 17–23.
Williams T, Barbosa-Solomieu V, Chinchar GD: "A decade of advances in iridovirus research" S.173-148. In: Maramorosch K, Shatkin A (Hrsg.): Advances in virus research, Vol.65, Academic Press, New York, USA, 2005
Disa Bäckström, Natalya Yutin, Steffen L. Jørgensen, Jennah Dharamshi, Felix Homa, Katarzyna Zaremba-Niedwiedzka, Anja Spang, Yuri I. Wolf, Eugene V. Koonin, Thijs J. G. Ettema; Richard P. Novick (Hrsg.): Virus Genomes from Deep Sea Sediments Expand the Ocean Megavirome and Support Independent Origins of Viral Gigantism, in: mBio Vol.10, Nr.2, März–April 2019, S.e02497-18, PDF (Mementodes Originals vom 29. Juni 2019 im Internet Archive)Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/mbio.asm.org, doi:10.1128/mBio.02497-18, PMC6401483 (freier Volltext), PMID 30837339, ResearchGate
Chinchar VG, Essbauer S, He JG, Hyatt A, Miyazaki T, Seligy V, Williams T: "Family Iridoviridae" S.145–162, in: Fauquet CM, Mayo MA, Maniloff J, Desselburger U, Ball LA (Hrsg.): Virus Taxonomy, Eighth report of the International Committee on Taxonomy of Viruses., Academic Press, San Diego, USA, 2005.
Gilda D. Lio-Po, Leobert D. de la Peňa; Kazuya Nagasawa, Erlinda R. Cruz-Lacierda (Hrsg.): Diseases of Cultured Groupers, Southeast Asian Fisheries Development Center (SEAFDEC), Aquaculture Department, Government of Japan Trust Fund, Dezember 2004, ISBN 971-8511-70-9
Maya A. Halaly, Kuttichantran Subramaniam, Samantha A. Koda, Vsevolod L. Popov, David Stone, KeithWay, Thomas B. Waltzek: Characterization of a Novel Megalocytivirus Isolated from European Chub (Squalius cephalus). In: MDPI – Viruses, Band 11, Nr.440, 2019; doi:10.3390/v11050440, ResearchGate:333122638, PDF (englisch).
Julien Andreani, Jacques Y. B. Khalil, Emeline Baptiste, Issam Hasni, Caroline Michelle, Didier Raoult, Anthony Levasseur, Bernard La Scola: Orpheovirus IHUMI-LCC2: A New Virus among the Giant Viruses In: Front. Microbiol., 22. Januar 2018; doi:10.3389/fmicb.2017.02643 (englisch).
William H. Wilson, Ilana C. Gilg, Mohammad Moniruzzaman, Erin K. Field, Sergey Koren, Gary R. LeCleir, Joaquín Martínez Martínez, Nicole J. Poulton, Brandon K. Swan, Ramunas Stepanauskas, Steven W. Wilhelm: Genomic exploration of individual giant ocean viruses. In: ISME Journal, Band 11, Nr.8, August 2017, S.1736–1745; doi:10.1038/ismej.2017.61, PMC5520044 (freier Volltext), PMID 28498373 (englisch).
Paul M. Hick, Kuttichantran Subramaniam Patrick Thompson Richard J. Whittington and Thomas B. Waltzekb: Complete Genome Sequence of a Bohle iridovirus Isolate from Ornate Burrowing Frogs (Limnodynastes ornatus) in Australia, in: Genome Announcv. 4(4); Juli-August 2016, PMC4991696 (freier Volltext), PMID 27540051, doi:10.1128/genomeA.00632-16
Herpetofauna Diseases, Southeast Partners in Amphibian and Reptile Conservation (SEPARC), Disease Task Team: Weitere Informationen zu Ranaviren und anderen Krankheitserregern, die die Amphibienpopulation beeinflussen, einschließlich des Chytridpilzes Batrachochytrium dendrobatidis und des ‚Salamanderfressers‘ Batrachochytrium salamandrivorans (Bsal).
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