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寡核苷酸是短 DNA 或 RNA低聚物,在基因檢測、研究和法醫學方面有廣泛的應用。寡核苷酸通常在實驗室里通過固相化學合成法製備[1],並可以按照用戶的需求合成指定序列的小片段核酸,對基因合成、聚合酶鏈式反應(PCR)、DNA測序、分子克隆至關重要。在自然界中,寡核苷酸通常以小RNA分子的形式出現 ,在基因表達的調控中發揮作用(如microRNA)[2];或者是較大核酸分子分解後的降解中間體。
寡核苷酸的特點是由構成整個分子的核苷酸殘基序列決定的。寡核苷酸的長度通常用"-mer"(來自希臘語meros,"部分"的意思)來表示。例如,具有6個核苷酸(nucleotide, nt)的寡核苷酸,被稱為六聚體,而一個25 nt的寡核苷酸通常被稱為 "25-mer"。寡核苷酸很容易以序列互補的方式與各自的互補寡核苷酸、DNA或RNA結合形成雙鏈體,或較少的更高級別的混合體。這一基本特性是使用寡核苷酸作為探針來檢測DNA或RNA特定序列的基礎。使用寡核苷酸的應用包括DNA微陣列,Southern印跡,等位基因特異性寡核苷酸分析[3], 熒光原位雜交(FISH),PCR和人工基因的合成。
寡核苷酸由2'-去氧核糖核苷酸組成,可以在骨架上或去氧核糖的2號位進行修飾,以達到不同的藥理效果。這些修飾使寡核苷酸具有新的特性,使其成為反義的關鍵因素[4][5]。
寡核苷酸是使用天然或化學修飾的受保護的核苷亞磷酰胺或在較小程度上使用非核苷化合物通過化學方法合成的。寡核苷酸鏈組裝是按照稱為「合成循環」的常規程序從 3' 到 5' 方向進行的。單個合成循環的完成使生長鏈添加一個核苷酸殘基。一般來說,寡核苷酸序列通常很短(13-25 個nt)[6]。 合成寡核苷酸的最大長度幾乎不超過 200 個核苷酸殘基。 HPLC或其他方法可用於分離具有所需序列的產物。
合成化學穩定的短寡核苷酸是反義寡核苷酸(ASO)療法的首個挑戰。天然存在的寡核苷酸很容易被細胞內豐富的核酸酶降解[7], 短寡核苷酸序列也具有弱的內在結合力和親和力,這有助於它們在體內降解[8]。
核苷酸的核苷有機硫代磷酸鹽(Phosphorothioate,PS) 類似物可以使構成的寡核苷酸具備一些有利的特徵。對寡核苷酸進行 PS 骨架修飾可以抵抗核酸酶的降解[10]。由於其可以在大多數核苷酸上相對容易和精準的實現,因此該策略能夠被廣泛的使用[9]。 此外有研究報道,寡核苷酸 5' 和 3' 端的熒光修飾可以用於評估寡核苷酸的結構、動力學和與環境的相互作用[11]。
另一種有利於寡核苷酸醫學應用的修飾是糖環2位的羥基/氫修飾。通過2位羥基/氫的修飾可以增強寡核苷酸與靶標的結合能力從而提高寡核苷酸的有效性,在反義寡核苷酸療法中尤為有效[8]。 這一策略還可以減少非特異性蛋白質結合,提高靶向特定蛋白質的準確性[8]。兩種最常用的修飾是 2'-O-甲基和 2'-O-甲氧基乙基[8]。核鹼基的熒光修飾也已經被報道[11]。
反義寡核苷酸是與目標序列互補的DNA 或 RNA單鏈[6]。其中反義RNA可以與特定信使RNA(mRNA)結合,從而阻止蛋白質翻譯,這一過程稱為雜交[12]。 反義寡核苷酸可用於靶向特定的互補(編碼或非編碼)RNA。 如果發生結合,雜交體可以被RNase H酶降解 [12]。RNase H 是一種水解 RNA 的酶,用於反義寡核苷酸應用時,會導致 mRNA 表達下調 80-95%[6]。
使用Morpholino反義寡核苷酸在脊椎動物中進行基因敲除,是由Janet Heasman首先使用Xenopus開發的用於研究改變的基因表達和基因功能的一項發育生物學的標準技術[13]。FDA批准的嗎啉代藥物包括eteplirsen和golodirsen。反義寡核苷酸也被用於抑制流感病毒在細胞系中的複製[14][15]。
由單個突變蛋白引起的神經退行性疾病是反義寡核苷酸療法的良好靶點,因為反義寡核苷酸能夠以高選擇性靶向和修飾非常特定的 RNA 序列[3]。 許多遺傳疾病,包括亨廷頓舞蹈病、阿爾茨海默病、帕金森病和肌萎縮側索硬化症,都與 DNA 改變有關,這些改變導致了不正確的RNA 序列,造成了具有毒性生理效應的錯誤翻譯的蛋白[16]。
寡核苷酸的細胞攝取/內化仍然是實現寡核苷酸療法成功的最大障礙。寡核苷酸的直接內化受到聚陰離子骨架的阻礙。 寡核苷酸的細胞攝取和細胞內運輸到作用地點的確切機制仍不清楚。此外,寡核苷酸結構/修飾和細胞類型的微小差異會導致細胞攝取/內化的巨大差異。細胞內化主要以能量依賴性方式(受體介導的內吞作用)進行,但不排除能量非依賴性被動擴散(=gymnosis)。 通過細胞膜後,寡核苷酸治療劑被包裹在早期內體中,這些內體被運輸到晚期內體,後者最終在低 pH 值下與含有降解酶的溶酶體融合[17]。 為了發揮其治療功能,寡核苷酸需要在其降解之前逃離內體。直到今天,還沒有通用的方法來克服遞送、細胞攝取和內體逃逸的問題,但存在幾種方法總是針對特定細胞[18]。
將寡核苷酸療法與負責細胞識別/攝取的實體共軛,不僅會增加攝取,而且還被認為會降低細胞攝取的難度,因為此時主要涉及一種(理想上已知的)機制[17]。 這已經通過小分子-寡核苷酸結合物實現,例如帶有靶向肝細胞受體的 N-乙酰半乳糖胺[19]。這些共軛物是獲得更多的細胞攝取和靶向遞送的極好例子,因為相應的受體在目標細胞上過度表達,導致靶向治療[18]。另一個廣泛使用和深入研究的用於靶向遞送和增加寡核苷酸細胞攝取的實體是抗體。
烷基酰胺可用作色譜固定相[20]。這些固定相已被研究用於分離寡核苷酸[21]。離子對反相高效液相色譜法被用於分離和分析自動合成的寡核苷酸[22]。
5-甲氧基水楊酸和精胺的混合物可用作MALDI質譜中寡核苷酸分析的基質[23]。電噴霧電離質譜 (ESI-MS) 也是表徵寡核苷酸質量的強大工具[24]。
DNA 微陣列是寡核苷酸的一種有用的分析應用。與標準cDNA 微陣列相比,基於寡核苷酸的微陣列對雜交具有更好的可控特異性,並且能夠測量選擇性剪接或聚腺苷酸化序列的存在和普遍性[25]。 DNA微陣列的一個子類型可以被描述為高密度結合寡核苷酸的基質(尼龍、玻璃等)[26]。 DNA 微陣列在生命科學中有許多應用。
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基因晶片有多種載體(玻璃、尼龍等),在這種晶片上,有高密度的寡核苷酸,可以對基因進行形態研究,基因轉譯表現研究可確診某些疾病。
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